21 611a
- V - |
Vorlesung zum Praktikum 21611b
2 Wo., ganztägig, inkl. Vorlesung, tägl., Fabeckstr. 36 a, 2. OG , Termin: n. V., Vergabe: 20.10., 9.00, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Werner Schröder
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Vorlesung / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Kommentar.: Inhalt / contents
purification of proteins by 1 and 2D electrophoresis, RP and IE high
performance
liquid chromatographie, electroblotting of proteins onto PVDF membrane,
manual and automatic N-terminal sequencing of proteins and peptides (ABI
473A Proteinsequencer), peptide generation by enzymatic and chemical cleavage
methods ( in solution, onto PVDF membrane and in gel)
modification and identification of cysteine and phosphoserine residues in
proteins
amino acid analysis, database search concerning protein identification and
homology
automatic synthesis of DNA and RNA oligomers, purification by HPLC and gel-
electrophoresis,
theoretical: mass spectrometry in protein and nucleic acid analysis
lectures: advanced methods in protein sequence analysis
Dr. W. Schröder: wfkjschr@chemie.fu-berlin.de |
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21 611b
- P - |
Proteinanalytisches Praktikum (Mikrosequenzierung)
2 Wo., ganztägig, inkl. Vorlesung, tägl., Fabeckstr. 36 a, 2. OG , Termin: n. V., Vergabe: 20.10., 9.00, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Werner Schröder
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Vorlesung / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Kommentar.: Inhalt / contents
purification of proteins by 1 and 2D electrophoresis, RP and IE high
performance
liquid chromatographie, electroblotting of proteins onto PVDF membrane,
manual and automatic N-terminal sequencing of proteins and peptides (ABI
473A Proteinsequencer), peptide generation by enzymatic and chemical cleavage
methods ( in solution, onto PVDF membrane and in gel)
modification and identification of cysteine and phosphoserine residues in
proteins
amino acid analysis, database search concerning protein identification and
homology
automatic synthesis of DNA and RNA oligomers, purification by HPLC and gel-
electrophoresis,
theoretical: mass spectrometry in protein and nucleic acid analysis
lectures: advanced methods in protein sequence analysis
Dr. W. Schröder: wfkjschr@chemie.fu-berlin.de |
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21 612a
- V - |
Von der Suche nach vasoaktiven Hormonen zum Blutdruck senkenden Therapeutikum, Vorlesung für Naturwissenschaftler und Mediziner
Vorb.: 21.10., 14.00 Uhr , Ort: Institut für Toxikologie, Garystr. 5, Seminarraum s. A. |
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Hartmut Schlüter,
J. Jankowski
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Vorlesung: 2 SWS ( 3 ECTS-Punkte).
1. Inhalt (contents):
Patho-/ Biochemie des Blutdrucksystems, Isolierung, Nachweis und Identifizierung von biologisch aktiven Molekülen
Pharmakologie von vasoaktiven Hormonen
Proteomics: Neue Ansätze zur Suche nach Krankheitsursachen
2. Literatur (literature)
Schlüter et al, Nature 367, 186-188 (1994)
Luo et al, FASEB J 13 (6), 695-705 (1999)
Jankowski et al, Circulation, 102, 2548-2552 (2000)
Jankowski et al, J. Biol. Chem. 276 (12), 8904-8909 (2001)
3. Weitere Bemerkungen (further contents)
Voraussetzung für das F-Praktikum "Funktionelle Proteomanalyse"
4. Beginn (beginning)
Vorbesprechung: 21.10., 14.00 Uhr
PD Dr. H. Schlüter: hschluet@zedat.fu-berlin.de
PD Dr. J. Jankowski: JOACHIM.JANKOWSKI@WEB.DE |
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21 612b
- S - |
Seminar zum Praktikum 21612c
s. A. |
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Hartmut Schlüter,
J. Jankowski
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Praktikum / Seminar : insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
1. Inhalt (contents) :
Grundlagen der Proteomanalyse,
Nachweis, Reinigung und Identifizierung von Enzymen,
Nachweis biologisch aktiver Peptide, Peptidanalytik,
Massenspektrometrie von Biomolekülen
2. Literatur (literature):
Jankowski (2001) Anal. Biochem. 290, 324-329
Schlüter (1997) Anal. Biochem. 246, 15-19
3. Weitere Bemerkungen (further contents)
Voraussetzung: Besuch der Vorlesung : "Von der Suche nach vasoaktiven Hormonen zum blutdrucksenkenden Therapeutikum"
4. Beginn (beginning): nach Absprache
PD Dr. J. Jankowski: JOACHIM.JANKOWSKI@WEB.DE
PD Dr. H. Schlüter: hschluet@zedat.fu-berlin.de |
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21 612c
- P - |
Funktionellen Proteomanalyse, Praktikum für Naturwissenschaftler und Mediziner
Termin: nach Absprache, Ort: Institut für Toxikologie, Garystr. 5; Vergabe 20.10., 9:00 Uhr, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Hartmut Schlüter,
J. Jankowski
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Praktikum / Seminar : insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
1. Inhalt (contents) :
Grundlagen der Proteomanalyse,
Nachweis, Reinigung und Identifizierung von Enzymen,
Nachweis biologisch aktiver Peptide, Peptidanalytik,
Massenspektrometrie von Biomolekülen
2. Literatur (literature):
Jankowski (2001) Anal. Biochem. 290, 324-329
Schlüter (1997) Anal. Biochem. 246, 15-19
3. Weitere Bemerkungen (further contents)
Voraussetzung: Besuch der Vorlesung : "Von der Suche nach vasoaktiven Hormonen zum blutdrucksenkenden Therapeutikum"
4. Beginn (beginning): nach Absprache
PD Dr. J. Jankowski: JOACHIM.JANKOWSKI@WEB.DE
PD Dr. H. Schlüter: hschluet@zedat.fu-berlin.de |
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21 613
- P - |
Protein Engineering
1 Wo ganztägig, Ort: FMP, Berlin Buch, Vorbesprechung/Vergabe: 20.10., 9.00 Uhr, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Christian Freund
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Praktikum: 2,5 SWS (2,5 ECTS-Punkte)
Theorie: Protein, Strukturen, Rationales Design, Proteinbibliotheken, evolutive Verfahren
Praktisch: Protein-Expression, NMR- und Fluoreszenzspektroskopie, NMR- basiertes Epitop-Mapping
Dr. C. Freund: cfreund@fmp-berlin.de |
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21 614a
- V - |
Proteinfehlfaltung als molekulares Schlüsselereignis bei neurodegenerativen Demenzen wie Alzheimer- und Creutzfeldt-Jakob-Krankheit
Mo, 15 - 16.30 Uhr, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Michael Beekes
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2 SWS (3 ECTS-Punkte)
Nach einem Überblick über die molekularen Abläufe und pathophysiologischen Prozesse bei
neurodegenerativen Demenzen sollen Gemeinsamkeiten und Unterschiede in der Pathogenese der
Alzheimer-, Lewy-Körperchen- und Creutzfeldt-Jakob-Krankheit beleuchtet werden um das
proteinbiochemische Leitmotiv dieser Erkrankungen zu verdeutlichen - die Fehlfaltung und
Aggregation spezieller wirtseigener Eiweiße. Dabei werden grundlegende Prinzipien der Faltung
und intermolekularen Assoziation von Proteinen erläutert, Techniken zur Untersuchung der
dreidimensionalen Eiweißstruktur vorgestellt sowie unterschiedliche experimentelle Ansätze zur
Erforschung dementieller Amyloidosen aufgezeigt. Dies soll es ermöglichen, nachzuvollziehen,
wie sich aus einem molekularen Verständnis des Krankheitsgeschehens neue Ansätze für die
Behandlung neurodegenerativer Demenzen ergeben. Zum Abschluß ist in einem Exkurs zum Thema BSE
und Creutzfeldt-Jakob-Krankheit vorgesehen, das Prionen-Konzept der "infektiösen
Proteinkonformationen" kritisch zu diskutieren.
Teilnehmerkreis: Die Vorlesung richtet sich fachübergreifend an Biowissenschaftler und
Mediziner im Hauptstudium.
Dr. M. Beekes: BeekesM@rki.de |
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21 614b
- S - |
Seminar : Dementielle Amyloidosen aus neurochemischer Sicht: Proteinfehlfaltung, Neuroinflammation und die Degeneration von Nervenzellen bei Prionkrankheiten und Morbus Alzheimer.
Ganztägiges zweiwöchiges Blockpraktikum mit begleitendem Seminar im
Robert Koch-Institut, 10 Praktikumstage vom 09.02.2004 - 20.02.2004, Vorbesprechung: 27.10.2003, 15.00 Uhr (s.t.), Hörsaal, Institut für Biochemie, Thielallee 63 s. A. |
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Michael Beekes
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Praktikum/Seminar insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte)
Kommentar
In ausgewählten Versuchen wird die Neurochemie pathophysiologischer Schlüsselprozesse beim Morbus Alzheimer und den Prionkrankheiten aus verschiedenen Blickwinkeln experimentell beleuchtet. Dies soll zum einen ein anschauliches Verständnis zentraler molekularer Abläufe bei neurodegenerativen Demenzen vermitteln und andererseits praktische Zugänge und Untersuchungstechniken zur Erforschung dieser Krankheiten aufzeigen.
Fehlgefaltete Amyloidproteine wie etwa das pathologische Prionprotein PrPSc, die essentiell in das Krankheitsgeschehen involviert sind, werden in Gehirnschnitten immunhistohemisch und mit Hilfe der neuartigen PET-Blot-Technik dargestellt. Zusätzlich sollen PrPSc und Ab nach biochemischer Extraktion aus Gewebeproben proteinanalytisch nachgewiesen sowie strukturell weitergehend charakterisiert werden. Begleitend dazu wird die Wirkung von Amyloidfibrillen auf Nervenzellen in organotypischen Hippocampus-Kulturen beobachtet. Durch den Nachweis der Aktivierung von Astrozyten und Mikrogliazellen in Prion-infizierten Gewebeschnitten und in Alzheimer-befallenen Hirnproben werden charakteristische neuroinflammatorische Prozesse bei dementiellen Amyloidosen verdeutlicht. In diesem Zusammenhang sollen u. a. auch spezifische Astrozyten-Aktivierungsmarker im Blutserum sowie pro-inflammatorische Cytokine in situ nachgewiesen werden. Die semi-quantitative mikroskopische Auswertung geeignet gefärbter Gewebeschnitte und der Nachweis biochemischer Neurodegenerationsmarker im Western Blot bzw. ELISA sollen schließlich die neuronalen Schädigungen bei Prionkrankheiten und M. Alzheimer, insbesondere auch das "cholinerge Defizit" bei letzterem, konkret verdeutlichen.
Teilnehmerkreis: Das Praktikum (6 Plätze) ist für Biochemiker und andere Biowissenschaftler im Hauptstudium konzipiert. Interessenten sollten die Vorlesung "Proteinfehlfaltung als molekulares Schlüsselereignis bei neurodegenerativen Demenzen wie der Alzheimer- und Creutzfeldt-Jakob-Krankheit" besucht haben und bereits über laborexperimentelle Erfahrung verfügen.
Kontakt
BeekesM@rki.de |
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21 614c
- P - |
Praktikum: Dementielle Amyloidosen aus neurochemischer Sicht: Proteinfehlfaltung, Neuroinflammation und die Degeneration von Nervenzellen bei Prionkrankheiten und Morbus Alzheimer.
Ganztägiges zweiwöchiges Blockpraktikum mit begleitendem Seminar im
Robert Koch-Institut, 10 Praktikumstage vom 09.02.2004 - 20.02.2004, Vorbesprechung: 27.10.2003, 15.00 Uhr (s.t.), Hörsaal, Institut für Biochemie, Thielallee 63 s. A. |
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Michael Beekes
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Praktikum/Seminar insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte)
Kommentar
In ausgewählten Versuchen wird die Neurochemie pathophysiologischer Schlüsselprozesse beim Morbus Alzheimer und den Prionkrankheiten aus verschiedenen Blickwinkeln experimentell beleuchtet. Dies soll zum einen ein anschauliches Verständnis zentraler molekularer Abläufe bei neurodegenerativen Demenzen vermitteln und andererseits praktische Zugänge und Untersuchungstechniken zur Erforschung dieser Krankheiten aufzeigen.
Fehlgefaltete Amyloidproteine wie etwa das pathologische Prionprotein PrPSc, die essentiell in das Krankheitsgeschehen involviert sind, werden in Gehirnschnitten immunhistohemisch und mit Hilfe der neuartigen PET-Blot-Technik dargestellt. Zusätzlich sollen PrPSc und Ab nach biochemischer Extraktion aus Gewebeproben proteinanalytisch nachgewiesen sowie strukturell weitergehend charakterisiert werden. Begleitend dazu wird die Wirkung von Amyloidfibrillen auf Nervenzellen in organotypischen Hippocampus-Kulturen beobachtet. Durch den Nachweis der Aktivierung von Astrozyten und Mikrogliazellen in Prion-infizierten Gewebeschnitten und in Alzheimer-befallenen Hirnproben werden charakteristische neuroinflammatorische Prozesse bei dementiellen Amyloidosen verdeutlicht. In diesem Zusammenhang sollen u. a. auch spezifische Astrozyten-Aktivierungsmarker im Blutserum sowie pro-inflammatorische Cytokine in situ nachgewiesen werden. Die semi-quantitative mikroskopische Auswertung geeignet gefärbter Gewebeschnitte und der Nachweis biochemischer Neurodegenerationsmarker im Western Blot bzw. ELISA sollen schließlich die neuronalen Schädigungen bei Prionkrankheiten und M. Alzheimer, insbesondere auch das "cholinerge Defizit" bei letzterem, konkret verdeutlichen.
Teilnehmerkreis: Das Praktikum (6 Plätze) ist für Biochemiker und andere Biowissenschaftler im Hauptstudium konzipiert. Interessenten sollten die Vorlesung "Proteinfehlfaltung als molekulares Schlüsselereignis bei neurodegenerativen Demenzen wie der Alzheimer- und Creutzfeldt-Jakob-Krankheit" besucht haben und bereits über laborexperimentelle Erfahrung verfügen.
Kontakt
BeekesM@rki.de |
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21 620a
- V - |
Vorlesung zum Praktikum "RNA-Technologien", Teil I, Nukleinsäuresynthese, Ribozyme, Proteinbioreaktor
2 Wo. tägl., Thielallee 63 s. A. |
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Volker A. Erdmann,
Jens Peter Fürste,
Thorsten Lamla,
Werner Schröder,
N.N.
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Vorlesung / Seminar / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
Chemische Synthese von Nukleinsäuren, Ribozymstrategien, zellfreie Proteinbiosynthese, Proteinsequenzierung
Prof. Dr. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. P. Fürste: fuerste@chemie.fu-berlin.de
T. Lamla: lamla@chemie.fu-berlin.de
Dr. W. Schröder: wfkjschr@chemie.fu-berlin.de |
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21 620b
- S - |
Seminar zum Praktikum RNA-Technologien, Teil I, Nukleinsäuresynthese, Ribozyme, Proteinbioreaktor
2 Wo. tägl., Thielallee 63 (n. V.) s. A. |
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Volker A. Erdmann,
Jens Peter Fürste,
Thorsten Lamla,
Werner Schröder,
N.N.
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Vorlesung / Seminar / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
Referate zur RNA-Technologie
Prof. Dr. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. P. Fürste: fuerste@chemie.fu-berlin.de
T. Lamla: lamla@chemie.fu-berlin.de
Dr. W. Schröder: wfkjschr@chemie.fu-berlin.de |
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21 620c
- P - |
RNA-Technologien, Teil I, Nukleinsäuresynthese, Ribozyme, Proteinbioreaktor
2 Wo., ganzt., Thielallee 63 (Vergabe: 20.10., 9.00, Thielallee 63, Hs) s. A. |
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Volker A. Erdmann,
Jens Peter Fürste,
Thorsten Lamla,
Werner Schröder,
N.N.
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Inhalt:
Chemische Synthese und Reinigung von Oligonukleotiden, Spaltungskinetik an Hammerhead-Ribozymen, zellfreie Biosynthese von Chloramphenicolacetyltransferase und Fettsäurebindungsprotein, enzymatische und chemische Spaltung von Proteinen, automatische N-terminale Sequenzierung nach Edman
Vorlesung / Seminar / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Prof. Dr. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. P. Fürste: fuerste@chemie.fu-berlin.de
T. Lamla: lamla@chemie.fu-berlin.de
Dr. W. Schröder: wfkjschr@chemie.fu-berlin.de |
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21 621a
- V - |
Vorlesung zum Praktikum RNA-Technologien II, Ribozyme, In-vitro-Selektion
2 Wo., tägl. Thielallee 63 (n. V.) s. A. |
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Volker A. Erdmann,
Jens Peter Fürste,
Jens Kurreck,
N.N.
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Vorlesung / Seminar / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
Molekulare Schmerzforschung, Antisense- und Ribozymstrategien in der Molekularen Medizin, Aptamere, Spiegelmere, Strategien der in vitro-Evolution
Prof. Dr. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. Kurreck: jkurreck@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. P. Fürste: fuerste@chemie.fu-berlin.de |
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21 621b
- S - |
Seminar zum Praktikum RNA-Technologien II, Ribozyme, In-vitro-Selektion
2 Wo., tägl., Thielallee 63 (n. V.) s. A. |
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Volker A. Erdmann,
Jens Peter Fürste,
Jens Kurreck,
N.N.
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Vorlesung / Seminar / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).I
Inhalt:
Referate zur RNA-Technologie
Prof. Dr. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. Kurreck: jkurreck@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. P. Fürste: fuerste@chemie.fu-berlin.de |
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21 621c
- P - |
RNA-Technologien, Teil II, Ribozyme, In-vitro-Selektion
2 Wo., ganztägig , Voraussetzung: Besuch der Vorlesung "Molekulare Medizin" im SS 2003 oder vorhergehenden Semestern, Vergabe: 20.10., 9.00, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Volker A. Erdmann,
Jens Kurreck,
Jens Peter Fürste,
N.N.
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Vorlesung / Seminar / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
Versuche zur Antisense- und Ribozymstrategie: in vitro Transkription, RNase H-AssaysRibozym Kinetiken, Zellkulturversuche, Untersuchungen modifizierter Oligonukleotide, in vitro Selektion von Aptameren
Prof. Dr. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. Kurreck: jkurreck@chemie.fu-berlin.de
Dr. J. P. Fürste: fuerste@chemie.fu-berlin.de |
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21 622a
- V - |
Vorlesung Methoden der Molekularen Virologie
Vergabe: 20.10., 9.00, Hs, Thielallee 63; Vorb.: 11.11., 14.00 s.t., Praktikum: 17.11.-21.11., Ort: Robert-Koch-Institut, Nordufer 20, Raum 223, 13353 Berlin s. A. |
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Annette Mankertz
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Vorlesung/Seminar/Praktikum: insgesamt 2,5 SWS (2,5 ECTS-Punkte)
1. Inhalt:
In der o.a. Lehrveranstaltung sollen am Beispiel animaler Circoviren Methoden vermittelt werden, die zur molekularbiologischen Charakterisierung der viralen Replikation und Genexpression eingesetzt werden. Vorgesehen sind u.a. die Analyse von Elementen des Replikationsorigins im DpnI Assay, die für die DNA Replikation der Circoviren von Bedeutung sind sowie die Untersuchung der Aktivität von viralen Promotoren im Luziferase Assay. Desweiteren soll die Interaktion viruskodierter Proteine untereinander nach Expression rekombinanter Virusproteine in E.coli z.B. in Pull-Down Assays untersucht werden. Der Bindung dieser Proteine an die virale DNA kann durch Analyse der veränderten elektrophoretischen Mobilität im Gelsystem nachgegangen werden. Um diese Methoden erfolgreich durchführen zu können, wird den Teilnehmern ein breites Spektrum an Nukleinsäure- und Proteinbezogenen Techniken vermittelt, gleichfalls das Arbeiten mit virusfreien und virusinfizierten Zellkulturen.
Dr. A. Mankertz: mankertza@rki.de |
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21 622b
- S - |
Seminar zum Praktikum
Vergabe: 20.10., 9.00, Hs, Thielallee 63; Vorb.: 11.11., 14.00 s.t., Praktikum: 17.11.-21.11., Ort: Robert-Koch-Institut, Nordufer 20, Raum 223, 13353 Berlin s. A. |
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Annette Mankertz
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Vorlesung/Seminar/Praktikum: insgesamt 2,5 SWS (2,5 ECTS-Punkte)
1. Inhalt:
In der o.a. Lehrveranstaltung sollen am Beispiel animaler Circoviren Methoden vermittelt werden, die zur molekularbiologischen Charakterisierung der viralen Replikation und Genexpression eingesetzt werden. Vorgesehen sind u.a. die Analyse von Elementen des Replikationsorigins im DpnI Assay, die für die DNA Replikation der Circoviren von Bedeutung sind sowie die Untersuchung der Aktivität von viralen Promotoren im Luziferase Assay. Desweiteren soll die Interaktion viruskodierter Proteine untereinander nach Expression rekombinanter Virusproteine in E.coli z.B. in Pull-Down Assays untersucht werden. Der Bindung dieser Proteine an die virale DNA kann durch Analyse der veränderten elektrophoretischen Mobilität im Gelsystem nachgegangen werden. Um diese Methoden erfolgreich durchführen zu können, wird den Teilnehmern ein breites Spektrum an Nukleinsäure- und Proteinbezogenen Techniken vermittelt, gleichfalls das Arbeiten mit virusfreien und virusinfizierten Zellkulturen.
Dr. A. Mankertz: mankertza@rki.de |
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21 622c
- P - |
Methoden der molekularen Virologie
Vergabe: 20.10., 9.00, Hs, Thielallee 63; Vorb.: 11.11., 14.00 s.t., Praktikum: 17.11.-21.11., Ort: Robert-Koch-Institut, Nordufer 20, Raum 223, 13353 Berlin s. A. |
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Annette Mankertz
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Vorlesung/Seminar/Praktikum: insgesamt 2,5 SWS (2,5 ECTS-Punkte)
1. Inhalt:
In der o.a. Lehrveranstaltung sollen am Beispiel animaler Circoviren Methoden vermittelt werden, die zur molekularbiologischen Charakterisierung der viralen Replikation und Genexpression eingesetzt werden. Vorgesehen sind u.a. die Analyse von Elementen des Replikationsorigins im DpnI Assay, die für die DNA Replikation der Circoviren von Bedeutung sind sowie die Untersuchung der Aktivität von viralen Promotoren im Luziferase Assay. Desweiteren soll die Interaktion viruskodierter Proteine untereinander nach Expression rekombinanter Virusproteine in E.coli z.B. in Pull-Down Assays untersucht werden. Der Bindung dieser Proteine an die virale DNA kann durch Analyse der veränderten elektrophoretischen Mobilität im Gelsystem nachgegangen werden. Um diese Methoden erfolgreich durchführen zu können, wird den Teilnehmern ein breites Spektrum an Nukleinsäure- und Proteinbezogenen Techniken vermittelt, gleichfalls das Arbeiten mit virusfreien und virusinfizierten Zellkulturen.
Dr. A. Mankertz: mankertza@rki.de |
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21 623a
- S - |
Seminar zum Praktikum 21 623b
4 Wochen ganztägig, 9.00-18.00, Voraussetzung: Teilnahme am Kurs Mikrobiologie I, Vergabe über Auslosung Mikrobiologie-Kurse, Robert-Koch-Institut, Nordufer 20, 13353 Berlin, Gruppe Biologische Sicherheit s. A. |
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Bernd Appel,
Eckhard Strauch,
Astrid Lewin,
Stefan Hertwig
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Praktikum / Seminar: insgesamt 7,5 SWS (für Biochemiker) (7,5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
Im Praktikum werden anhand von Modellorganismen mikro- und molekulargenetische Experimente im laufenden Laborbetrieb unter Anleitung von Wissenschaftlern und Doktoranden durchgeführt. Im einzelnen werden Experimente an Enterobakterien , wie E. coli und Yersinien, sowie Bacilli und Mykobakterien zum Einsatz kommen. Darüberhinaus wird die Wechselwirkung zwischen apathogenen und pathogenen Bakterien bezüglich des Gentransfers und einer möglichen therapeutischen Verdrängung bearbeitet. Bei der Charakterisierung isolierter Makromoleküle wie Nukleinsäuren und Proteine kommt ein großes Spektrum biochemischer Methoden zum Einsatz.
Vor Durchführung des Kurses ist als Grundvoraussetzung der mikrobiologische Kurs I zu bestehen, des weiteren werden ausreichende praktische Kenntnisse der Molekularbiologie und Biochemie erwartet. Vor Praktikumsbeginn ist eine betriebsärztliche Untersuchung nach GenTSV erforderlich (L2/S2-Labor)
Der Kurs wird von Seminaren begleitet, in denen die Praktikanten u.a. über den Fortgang ihrer Experimente berichten.
Vergabe über Auswahlverfahren Hauptstudium Mikrobiologie.
Prof. B. Appel: appelB@rki.de |
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21 623b
- P - |
Mikrobiologische und molekulargenetische Methoden zur Charakterisierung, Gentransfer bei Bakterien und Erregerbekämpfung
4 Wochen ganztägig, 9.00-18.00, Voraussetzung: Teilnahme am Kurs Mikrobiologie I, Vergabe über Auslosung Mikrobiologie-Kurse, Robert-Koch-Institut, Nordufer 20, 13353 Berlin, Gruppe Biologische Sicherheit s. A. |
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Bernd Appel,
Eckhard Strauch,
Astrid Lewin,
Stefan Hertwig
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Praktikum / Seminar: insgesamt 7,5 SWS (für Biochemiker) (7,5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
Im Praktikum werden anhand von Modellorganismen mikro- und molekulargenetische Experimente im laufenden Laborbetrieb unter Anleitung von Wissenschaftlern und Doktoranden durchgeführt. Im einzelnen werden Experimente an Enterobakterien , wie E. coli und Yersinien, sowie Bacilli und Mykobakterien zum Einsatz kommen. Darüberhinaus wird die Wechselwirkung zwischen apathogenen und pathogenen Bakterien bezüglich des Gentransfers und einer möglichen therapeutischen Verdrängung bearbeitet. Bei der Charakterisierung isolierter Makromoleküle wie Nukleinsäuren und Proteine kommt ein großes Spektrum biochemischer Methoden zum Einsatz.
Vor Durchführung des Kurses ist als Grundvoraussetzung der mikrobiologische Kurs I zu bestehen, des weiteren werden ausreichende praktische Kenntnisse der Molekularbiologie und Biochemie erwartet. Vor Praktikumsbeginn ist eine betriebsärztliche Untersuchung nach GenTSV erforderlich (L2/S2-Labor)
Der Kurs wird von Seminaren begleitet, in denen die Praktikanten u.a. über den Fortgang ihrer Experimente berichten.
Vergabe über Auswahlverfahren Hauptstudium Mikrobiologie.
Prof. B. Appel: appelB@rki.de |
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21 624a
- S - |
Seminar molekulare Zellbiologie
Di 19.00-20.30, Charité Campus Virchow-Klinikum, Augustenburger Platz 1. u. Forschungshaus, 1. OG. SR 1.0020 (Vorbesprechung: 20.10., 9.00 Hs, Thielallee 63) Beginn: 21.10. s. A. |
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Reinhard Geßner,
Jens Peter von Kries,
u. a.
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Seminar: 2 SWS (2 ECTS-Punkte).
1. Contents:
This weekly seminar gives a brief survey of all major fields of
molecular cell biology as well as an in depth view on cell adhesion and
signal transduction involved in cellular differentiation. It also
features several modern techniques commonly used in cell biology.
2. Literature:
Books: "Molecular Biology of the Cell" by Alberts et al. (4th,2002,
Garland Pub, ISBN 081534072-9), "Molecular Cell Biology" by Lodish et al.
(4th, W H Freeman & Co., ISBN 071673706X).
Recent articles as presented in the seminar.
3. Further remarks:
Each participant is required to present a short talk on a
scientific paper related to the main subject of that day. The
presentations can either be given in German or English. If requested,
participants will be supported in preparing their talk.
4. Beginning:
21.10., 19:00 hours
Dr. R. Geßner: gessner@charite.de
Dr. J. P. v. Kries: kriesjp@mdc-berlin.de |
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21 624b
- P - |
Praktikum Molekulare Zellbiologie
Mo-Fr 9.00-19.00 Uhr (Voraussetzung ist die Teilnahme an dem Seminar "Molekulare Zellbiologie", 21 624a) (Vorbesprechung: 20.10., 9.00 Hs, Thielallee 63) s. A. |
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Reinhard Geßner,
u. Mitarbeiter,
Jens Peter von Kries
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Praktikum: 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
1. Contents:
This practical course concentrates on cell adhesion and signal
transduction involved in cellular differentiation. It leads the
participants from simple cell culture techniques to genetic modifications
of cellular systems and ultimately to the tracing molecular events within
living cells with state of the art techniques.
2. Literature:
Books: "Molecular Biology of the Cell" by Alberts et al. (4th,2002,
Garland Pub, ISBN 081534072-9), "Molecular Cell Biology" by Lodish et al.
(4th, W H Freeman & Co., ISBN 071673706X).
Recent articles in the field of cell biology as reviewed in the
accompanying seminar (21 624a).
3. Further remarks:
Required for admission is the successfull participation in
the accompanying seminar "Molecular Cell Biology" (21 953a). Each
participant is required to prepare a written protocol in German or English
language.
4. Beginning:
Usually on Monday 9:00 am of the first week of the lecture
free period following the current term.
Dr. R. Geßner: gessner@charite.de
Dr. J. P. v. Kries: kriesjp@mdc-berlin.de |
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21 625
- P - |
RNA interference
Praktikum, 1 wöchig, Ort: Praktikumsräume, Thielallee 63, Voraussetzung: Besuch der Vorlesung "Molekulare Medizin" im SS 2003 (oder vorhergehenden Semestern) s. A. |
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Jens Kurreck
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Praktikum, 1 wöchig, 2,5 SWS (2,5 ECTS-Punkte)
Zielgruppe: Biochemiestudenten im Hauptstudium
Kommentar:
In diesem Praktikum soll die neu entwickelte Technik des RNA interference vermittelt werden. Kurze, doppelsträngige RNA Moleküle (siRNA) oder Vektoren, die die siRNA exprimieren, werden in eukaryontische Zellen transfiziert, um spezifisch die Expression eines Zielgens zu inhibieren. Der Nachweis der Suppression erfolgt mittels Fluoreszenzmikroskopie, Western Blot und Northern Blot. Die Theorie der Methode wird in einem begleitenden Seminar vertieft.
Teilnehmer der Vorlesung ‚Molekulare Medizin', die im Sommersemester stattfindet, werden bevorzugt berücksichtigt.
email: jkurreck@chemie.fu-berlin.de |
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21 626
- P - |
Molekulargenetik komplexer Erkrankungen; freies Mitarbeiterpraktikum
Vorbespr. 20.10., 9.00 Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Margret Hoehe
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Mitarbeiten max. 8 SWS
ECTS s. Beschreibung
4 Wochen = 8 ECTS-Punkte
6 Wochen = 11 ECTS-Punkte
8 Wochen = 13 ECTS-Punkte
10 Wochen = 15 ECTS-Punkte
12 Wochen = 17 ECTS-Punkte
Dr. M. Hoehe: hoehe@molgen.mpg.de |
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21 630a
- S - |
Zellbiologisches Seminar für Naturwissenschaftler und Mediziner
Ort: Inst. für Klinische Chemie und Pathobiochemie - Universitätsklinikum Benjamin Franklin, Hindenburgdamm 30, 12200 Berlin, Raum 5740 (5. OG, Fahrstuhl 18), Vorbespr.: Mi, 22.10., 17.15 Uhr, Beginn 05.11., Infos unter http://www.medizin.fu-berlin.de/klinchem/zellbiol_sm_prk.htm, (Querverweis zur Humanmed 02 644S) s. A. |
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Jens Dernedde,
Hendrik Fuchs,
Otmar Huber,
Dirk Meyer zum Büschenfelde
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Seminar: 2 SWS (2 ECTS-Punkte).
1. Inhalt:
Proteinexpression und posttranslationale Modifikationen; Strukturen und Funktionen des Cytoskeletts; Pro- und Eukaryote Expressionssysteme; Immunfluoreszenzmikroskopie; 2D-Gelelektrophorese; In-vitro-Testsysteme zur Proteasecharakterisierung; PCR und Sequenzierung; Shedding von Zelloberflächenproteinen; Zelladhäsion in dynamischen Systemen und im
Zellverband; die Proteinbiosynthese inhibierende Toxine; Regulation des Eisenstoffwechsels
2. Literatur:
Literaturstudium grundlegender zellbiologischer Prozesse.
PD Dr. H. Fuchs: hendrik.fuchs@ukbf.fu-berlin.de |
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21 630b
- P - |
Zellbiologisches Praktikum für Naturwissenschaftler und Mediziner
Blockpraktikum 23.02. - 05.03. (8:30 -18:30 Uhr), Vorb.: 22.10., 17:15 Uhr, Teilnahme am Zellbiolog. Seminar ist obligatorisch. Ort: Inst. f. Klinische Chemie und Pathobiochemie - Universitätsklinikum Benjamin Franklin, Hindenburgdamm 30, 12200 Berlin. 5. OG (Fahrstuhl 15), Infos: Tel.: 8445-2559 oder http://www.medizin.fu-berlin.de/klinchem/zellbiol_sm_prk.htm, (Querverweis zur Humanmed 02 645P) s. A. |
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Jens Dernedde,
Hendrik Fuchs,
Otmar Huber,
Dirk Meyer zum Büschenfelde,
José-B. Gonzalez
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Praktikum: 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
1. Inhalt:
In vitro-Testsysteme zur Proteasecharakterisierung; Zelladhäsionsassays; Quantifizierung der
Zell-Zell-Adhäsivität; PCR und Sequenzierung; Immunfluoreszenzmikroskopie; 2D-Gelelektrophorese;
Affinitätschromatographie rekombinanter Proteine. Mechanismus und Wirkung von Toxinen; Cytotoxizitätsassays; in vivo- Mutagenese. Charakterisierung von Sheddingprozessen am Beispiel des humanen Transferrinrezeptors.
2. Literatur:
Literaturstudium grundlegender Methoden in der Zellbiologie und Proteinbiochemie.
PD Dr. H. Fuchs: hendrik.fuchs@ukbf.fu-berlin.de |
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21 640a
- S - |
Seminar zum Praktikum 21 640b
Seminarraum, Thielallee 63, Termin s. A. |
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Ferdinand Hucho,
Henning Otto
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Seminar / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Kommentar zum Seminar 21 640a "Neurochemie und Regulation"
In diesem Seminar werden die theoretischen Grundlagen zum Praktikum 21 640b gelegt. Die Themen umfassen eine Einführung in die Neurochemie, einen Überblick über Prinzipien der Regulation und der Signaltransduktion, eine kurze Einführung zu Zellzyklus und Apoptose sowie vertiefende Unterrichtseinheiten zu den folgenden Themen:
Theorie des Bindungstests; Regulation des Glykogenstoffwechsels; Allosterie; Calciumsignaling; Lipide als Signalmoleküle; Proteinkinasen und -phosphatasen; Proteindomänen als Module im Proteinaufbau; Neurotransmitterfreisetzung; Neurodegenerative Erkrankungen.
Außerdem wird ein Überblick über die Struktur der Fachliteratur in den Biowissenschaften und über Ressourcen im Internet angeboten.
Prof. Dr. F. Hucho: hucho@chemie.fu-berlin.de
Dr. H. Otto: hotto@chemie.fu-berlin.de |
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21 640b
- P - |
Neurochemie und Regulation für Studierende im Hauptstudium Biochemie
2 Wo., ganzt., Termin s. A. , Thielallee 63, (Vorbespr.: 20.10., 9.00, Hs, Thielallee 63) s. A. |
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Ferdinand Hucho,
Henning Otto
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Seminar / Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Kommentar zum Praktikum 21 640b "Neurochemie und Regulation"
Das Praktikum ist für Studenten in der ersten Hälfte des Hauptstudiums konzipiert. In der ersten Praktikumswoche werden einfache Grundversuche zur allosterischen Regulation der Glykogenphosphorylase, zur Ligandenbindung am nikotinischen Azetylcholinrezeptor und zur signalvermittelten Proteinposphorylierung durchgeführt. Diese Versuche dienen als Grundlage für die eigenständige Erarbeitung von Versuchen, die in der zweiten Praktikumswoche individuell umgesetzt werden.
Die erfolgreiche Teilnahme am Praktikum sowie am begleitenden Seminar 21 640a wird durch das Halten eines Referates zu einem der Seminarthemen, ein Protokoll sowie eine mündliche Prüfung in Form eine Kolloquiums dokumentiert.
Prof. Dr. F. Hucho: hucho@chemie.fu-berlin.de
Dr. H. Otto: hotto@chemie.fu-berlin.de |
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21 641
- P - |
Mechanismen der Signalverarbeitung
23.02.-27.02. (ganztägig), Teilnehmerzahl: 6, Ort: Forschungsinstitut für Molekulare Pharmakologie (FMP), Robert-Rössle-Str. 10 in Berlin-Buch (Tel.: 94 79 31 71)
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Uwe Vinkemeier
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21 642a
- V - |
Regulation der Genexpression durch Onkogene und Viren und Intervention durch Gentherapie
Vorlesungstermine: 12.12., 16.1., 13.2, jeweils 15.15-19.00
Vorlesung / Seminar: insgesamt 1 SWS (1,5 ECTS-Punkte). Thielallee 63; Hs |
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Karin Mölling
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1. Inhalt:
Signaltransduktion in normalen und Tumorzellen, Protein Kinase Kaskaden, Transkriptionsregulation, Proteindomänen, Modulation durch Phosphorylierung, Protein-Protein-Interaktion
Onkogene von Viren und zelluläre Onkogene, Tumorsuppressororgane, Multifaktorielle Krebsentstehung
Viren, molekulare Mechanismen der Replikation, Pathogenese, Schwerpunkt HIV,
Gentherapie (Ribozyme, Antisense, Triplex, Immunmodulatoren, Suizidgene, Viren als Vektoren)
2. Literatur:
Molekulare Onkologie, Christoph Wagener, Thieme Verlag (1999)
Molekulare Virologie, S. Modrow u. D. Falke, Spektrumverlag (2003)
3. Weitere Bemerkungen:
Möglichkeiten zur Labormitarbeit sind in Zürich (Institut für Medizinische Virologie) gegeben (s. 21 642c), (2 Monate nach Absprache)
Prof. Dr. K. Mölling: moelling@immv.unizh.ch |
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21 642b
- S - |
Seminar zur Vorlesung 21642a
Vorlesung: ein Freitag pro Monat s. Ankündigung, jeweils 15.15-19.00 s. A. - Thielallee 63; Hs |
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Karin Mölling
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Vorlesung / Seminar: insgesamt 1 SWS (1,5 ECTS-Punkte).
1. Inhalt:
Signaltransduktion in normalen und Tumorzellen, Protein Kinase Kaskaden, Transkriptionsregulation, Proteindomänen, Modulation durch Phosphorylierung, Protein-Protein-Interaktion
Onkogene von Viren und zelluläre Onkogene, Tumorsuppressororgane, Multifaktorielle Krebsentstehung
Viren, molekulare Mechanismen der Replikation, Pathogenese, Schwerpunkt HIV,
Gentherapie (Ribozyme, Antisense, Triplex, Immunmodulatoren, Suizidgene, Viren als Vektoren)
2. Literatur:
Molekulare Onkologie, Christoph Wagener, Thieme Verlag (1999)
Molekulare Virologie, S. Modrow u. D. Falke, Spektrumverlag (2003)
3. Weitere Bemerkungen:
Möglichkeiten zur Labormitarbeit sind in Zürich (Institut für Medizinische Virologie) gegeben (s. 21 642c), (2 Monate nach Absprache)
Prof. Dr. K. Mölling: moelling@immv.unizh.ch |
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21 642c
- P - |
Mitarbeitspraktikum Signaltransduktion in normalen und Tumorzellen, Viren und Gentherapie für Naturwissenschaftler
2 Monate ganztägig im Institut für Medizinische Virologie in Zürich, nach Absprache (Tel.: 0041-1-6342652), E-mail: moelling@immv.unizh.ch jederzeit nach Absprache, Vorb. 20.10., 9.00 Uhr, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Karin Mölling
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Mitarbeiten max. 8 SWS
ECTS s. Beschreibung
4 Wochen = 8 ECTS-Punkte
6 Wochen = 11 ECTS-Punkte
8 Wochen = 13 ECTS-Punkte
10 Wochen = 15 ECTS-Punkte
12 Wochen = 17 ECTS-Punkte
1. Inhalt (contents):
Onkogene, Tumorsuppressor, Kinase Kaskaden, Gengregulation, Viren, Gentherapie, Molekulare Mechanismen der Krebsentstehung
2. Literatur (literature):
-Ch. Wagner: Molekulare Onkologie, Thieme Verlag, Stuttgart (99)
- Modrow/Falke: Molekulare Virologie, Spektrum, Akad. Verlag (2003)
3 Weitere Bemerkungen (further comments)
auch für Bioinformatiker
4. Beginn (beginning): nach Absprache
Prof. Dr. K. Mölling: moelling@immv.unizh.ch |
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21 643a
- S - |
Seminar Experimentelle Onkologie: Mechanismen und Signalwege in der innovativen Tumortherapie
Termin: 03.-14.11.03 (9.00 - 17.00 Uhr), Vorbesprechung: 24.10. 17.00 Uhr,
Ort: Arnimallee 22, Zellbiologie-Labor (ehem. Tier-OP) s. A. |
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Michael Höpfner,
Kerstin Maaser
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Praktikum/Seminar insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte)
Kommentar:
Die zweiwöchige Blockveranstaltung beinhaltet sowohl ein Seminar als auch ein Praktikum. Im Seminar werden Themen wie Tumorentstehung und -progression und Mechanismen gängiger und neuartiger Therapieansätze behandelt. Dabei werden Grundlagen zellbiologischer Prozesse wie Apoptose, Nekrose, Zellzyklusregulations- und Zytototoxizitätsmechanismen erörtert. Das Praktikum umfasst folgende Methoden: Zellproliferationsassays (Kristallviolett-Assay, Einbau von Bromodesoxyuridin), Zytotoxizitätsnachweise (Freisetzung von Lactatdehydrogenase, fluoreszenzmikroskopischer Life/Dead-Assay), verschiedene Apoptose-Assays und durchflusszytometrische Zellzyklusmessungen.
Dr. Michael Höpfner: mhoepfnr@zedat.fu-berlin.de
Dr. Kerstin Maaser: kerma@zedat.fu-berlin.de |
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21 643b
- P - |
Praktikum Experimentelle Onkologie: Mechanismen und Signalwege in der innovativen Tumortherapie
Termin: 03.-14.11.03 (9.00 - 17.00 Uhr), Vorbesprechung: 24.10. 17.00 Uhr,
Ort: Arnimallee 22, Zellbiologie-Labor (ehem. Tier-OP); (Vergabe: 20.10., 9.00 - Thielallee 63, Hs) s. A. |
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Michael Höpfner,
Kerstin Maaser
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Praktikum/Seminar insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte)
Kommentar:
Die zweiwöchige Blockveranstaltung beinhaltet sowohl ein Seminar als auch ein Praktikum. Im Seminar werden Themen wie Tumorentstehung und -progression und Mechanismen gängiger und neuartiger Therapieansätze behandelt. Dabei werden Grundlagen zellbiologischer Prozesse wie Apoptose, Nekrose, Zellzyklusregulations- und Zytototoxizitätsmechanismen erörtert. Das Praktikum umfasst folgende Methoden: Zellproliferationsassays (Kristallviolett-Assay, Einbau von Bromodesoxyuridin), Zytotoxizitätsnachweise (Freisetzung von Lactatdehydrogenase, fluoreszenzmikroskopischer Life/Dead-Assay), verschiedene Apoptose-Assays und durchflusszytometrische Zellzyklusmessungen.
Dr. Michael Höpfner: mhoepfnr@zedat.fu-berlin.de
Dr. Kerstin Maaser: kerma@zedat.fu-berlin.de |
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(21 165)
- P/S - |
Praktikum der Radiochemie für Biochemiker, Teil I
1-wöchig, ganztägig; Terminzuweisung durch den Bereich Biochemie Fabeckstr. 34-36; 6. OG |
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Hellmut Bischoff,
Ulrich Abram,
u. Mitarb.
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21 650a
- S - |
Seminar zum Praktikum 21 650b
Teil I: 1 Wo. ganzt., Teil II: 1 Wo. ganzt., Fabeckstr. 34-36 (s. A.), Vergabe: 20.10., 9.00 Uhr., Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Peter Franke,
N.N.
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Praktikum / Seminar: insgesamt 2,5 SWS (2,5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
-Radioaktive Markierung von Plasmid DNA durch "random-primed" Einbau von
32P-CTP
-Nicht radioaktive Markierung von Plasmid-DNA durch
"random-primed"-Einbau von
Digoxigenin markiertem dUTP
-Radioaktive Endmarkierung von Plasmid-DNA-Fragmenten mit gamma-32P-ATP
-DNA-Dot-Blot, DNA-DNA-Hybridisierung, Detektion mit radioaktiven und
nicht
radioaktiven Methoden im Vergleich
-ADP-Ribosylierung
Literatur: TiBS 1999, 24:415-417; TiPS 1999,20: 171-181,
oder
www.sciencedirect.com
Bemerkungen: Kompaktpraktikum (3mal je 1 Woche mit jeweils 8 Teilnehmern). Eingangsvoraussetzung ist das Vordiplom.
Dr. P. Franke: pfranke@chemie.fu-berlin.de |
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21 650b
- P - |
Praktikum der Radiochemie für Biochemiker, Teil II
Teil I: 1 Wo. ganzt., Teil II: 1 Wo. ganzt., Fabeckstr. 34-36 (s. A.), Vergabe: 20.10., 9.00 Uhr, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Peter Franke,
N.N.
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Praktikum / Seminar: insgesamt 2,5 SWS (2,5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
-Radioaktive Markierung von Plasmid DNA durch "random-primed" Einbau von
32P-CTP
-Nicht radioaktive Markierung von Plasmid-DNA durch
"random-primed"-Einbau von
Digoxigenin markiertem dUTP
-Radioaktive Endmarkierung von Plasmid-DNA-Fragmenten mit gamma-32P-ATP
-DNA-Dot-Blot, DNA-DNA-Hybridisierung, Detektion mit radioaktiven und
nicht
radioaktiven Methoden im Vergleich
-ADP-Ribosylierung
Literatur: TiBS 1999, 24:415-417; TiPS 1999,20: 171-181,
oder
www.sciencedirect.com
Bemerkungen: Kompaktpraktikum (3mal je 1 Woche mit jeweils 8 Teilnehmern). Eingangsvoraussetzung ist das Vordiplom.
Dr. P. Franke: pfranke@chemie.fu-berlin.de |
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21 660a
- V - |
Biochemie von Spurenelementen (begleitende Vorlesung zum Praktikum)
jeweils mittwochs 16.30-18.00, Beginn: 22.10., Ort: Hahn-Meitner-Institut, Raum LR 338, 2. OG, Glienicker Str. 100, 14109 Berlin s. A. |
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Antonios Kyriakopoulos
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Vorlesung 2 SWS (3 Ects-Punkte)
Praktikum / Seminar: 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
1. Inhalt:
Im Rahmen der Vorlesungen "Biochemie von Grundelementen" werden alle Spurenelemente hinsichtlich ihrer biochemischen und medizinischen Relevanz vorgestellt.
Die Proteinbiochemie der essentiellen Spurenelemente (Cr, Mn, Co, Cu und Sn) wird in Bezug auf die Bindungsform an Enzyme und ihre katalytische Funktion behandelt.
Weiterhin werden einige Zn-Proteine auf Grund ihrer großen biochemischen Wichtigkeit vorgestellt und diskutiert.
Der Stoffwechsel und die Familie der Selenoporteine wird ausführlich (in Prokaryoten und Eukaryoten) behandelt. Zu diesem Kapitel gehören: Entdeckung der Selenoproteine, Einbau von Selen in die Proteinkette, die Besonderheit ihrer Biosynthese, die 21. Aminosäure SeCys, Struktur und Funktion von einigen gut charakterisierten Selenoproteinen.
Diskussion und Vorstellung über die Wirkung von neuen Selenoproteinen in den Biowissenschaften.
Dr. A. Kyriakopoulos: kyriakopoulos@hmi.de |
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21 660b
- S - |
Seminar zum Praktikum 21 660c
Vergabe: 20.10., 9.00 Uhr, Hs, Thielallee 63, Praktikumstermin: 08.12. - 19.12., tägl. 9.00-17.00, Ort: Hahn-Meitner-Inst., Glienicker Str. 100, Raum LR. 315, 2. Stock, 14109 Berlin s. A. |
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Antonios Kyriakopoulos,
Dietrich Behne
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Vorlesung 2 SWS (3 ECTS-Punkte)
Praktikum / Seminar: 5 SWS (5 ECTS-Punkte)
1. Inhalt:
Das Seminar besteht aus zwei Teilen:
Der erste Teil umfasst die Erläuterungen zu den Aufgaben des Praktikums und darüber hinaus theoretische Grundlagen zu den Suborganellen, in denen die verschiedenen Selenoproteine lokalisiert sind.
Der zweite Teil besteht aus der Diskussion der neuesten Literatur zu den Selenoproteinen. Überdies werden zwei Themen über moderne Proteinbiochemie ausgewählt. Bei den ausgewählten Kapiteln ist der Teamgeist der Studenten gefordert.
Praktikumsaufgaben:
· Isolierung von Selenoproteinen aus verschiedenen Geweben der Ratte
· Subzelluäre Lokalisation von Se-Proteinen (Lysosomen, Golgi-Membranen, Nukleus und Nukleoli)
· Nachweis von 75SeSys mittels RP-HPLC
· DNA/75Se-Protein-Interaktion; Transport von 75Se-Proteinen in den Kernen und Nukleoli von Leber und Niere der Ratte
· Immunochemischer Antigennachweis nach Elektrotransfer
· Densitometrie mit automatischer Auswertung von 1DE und 2DE-Gelen
· Detektion von Selenoproteinen (Audioradiographie)
· Detektion von 75Se (gamma-Spektrometrie)
· Doppelmarkierung von Proteinen mit Radiotracern
Dr. A. Kyriakopoulos: kyriakopoulos@hmi.de |
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21 660c
- P - |
Biochemie von Spurenelementen
Vergabe: 20.10., 9.00 Uhr, Hs, Thielallee 63, Praktikumstermin: 08.12. - 19.12., tägl. 9.00-17.00, Ort: Hahn-Meitner-Inst., Glienicker Str. 100, Raum LR. 315, 2. Stock, 14109 Berlin s. A. |
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Antonios Kyriakopoulos,
Dietrich Behne
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Vorlesung 2 SWS (3 ECTS-Punkte)
Praktikum / Seminar: 5 SWS (5 ECTS-Punkte)
1. Inhalt:
Das Seminar besteht aus zwei Teilen:
Der erste Teil umfasst die Erläuterungen zu den Aufgaben des Praktikums und darüber hinaus theoretische Grundlagen zu den Suborganellen, in denen die verschiedenen Selenoproteine lokalisiert sind.
Der zweite Teil besteht aus der Diskussion der neuesten Literatur zu den Selenoproteinen. Überdies werden zwei Themen über moderne Proteinbiochemie ausgewählt. Bei den ausgewählten Kapiteln ist der Teamgeist der Studenten gefordert.
Praktikumsaufgaben:
· Isolierung von Selenoproteinen aus verschiedenen Geweben der Ratte
· Subzelluäre Lokalisation von Se-Proteinen (Lysosomen, Golgi-Membranen, Nukleus und Nukleoli)
· Nachweis von 75SeSys mittels RP-HPLC
· DNA/75Se-Protein-Interaktion; Transport von 75Se-Proteinen in den Kernen und Nukleoli von Leber und Niere der Ratte
· Immunochemischer Antigennachweis nach Elektrotransfer
· Densitometrie mit automatischer Auswertung von 1DE und 2DE-Gelen
· Detektion von Selenoproteinen (Audioradiographie)
· Detektion von 75Se (gamma-Spektrometrie)
· Doppelmarkierung von Proteinen mit Radiotracern
Dr. A. Kyriakopoulos: kyriakopoulos@hmi.de |
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21 664a
- V - |
Grundlagen der biologischen NMR-Spektroskopie (für Biochemiker und Chemiker im Hauptstudium)
Termin: s. A., 14 Std, Ort: Forschungsinstiut für Molekulare Pharmakologie, Gebäude 81, Raum C1.14, Robert-Rössle-Str. 10, 13122 Berlin s. A. |
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Hartmut Oschkinat
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Vorlesung : 1 SWS (1,5 ECTS-Punkte)
Praktikum: 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Prof. Dr. Oschkinat: oschkinat@fmp-berlin.de |
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21 664b
- P - |
Biologische NMR-Spektroskopie (für Biochemiker und Chemiker im Hauptstudium)
Termin: s. A. , 2 Wo, ganztägig (9 - 17.00 Uhr), Teilnahme an der gleichnamigen Vorlesung wird vorausgesetzt, Ort: Forschungsinstitut für Molekulare Pharmakologie, Gebäude 81, Robert-Rössle-Str. 10, 13122 Berlin s. A. |
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Hartmut Oschkinat
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Vorlesung : 1 SWS (1,5 ECTS-Punkte)
Praktikum: 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Es finden Seminare mit Beiträgen der Studenten statt.
Prof. Dr. Oschkinat: oschkinat@fmp-berlin.de |
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21 665a
- V/Ü - |
Biophysikalische Methoden (für Biochemiker und Chemiker im Hauptstudium)
Termin: s. A., 24 Std, Ort: Forschungsinstitut für Molekulare Pharmakologie, Gebäude 81, Raum C1.14, Robert-Rössle-Str. 10, 13122 Berlin s. A. |
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Hartmut Oschkinat
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Vorlesung / Übungen: 1,5 SWS ( ECTS-Punkte).
Praktikum:5 SWS (5 ECTS-Punkte)
Prof. Dr. Oschkinat: oschkinat@fmp-berlin.de |
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21 665b
- P - |
Biophysikalische Methoden (für Biochemiker und Chemiker im Hauptstudium)
Termin: s. A. , 2 Wo, ganztägig, Teilnahme an der gleichnamigen Vorlesung wird vorausgesetzt, Ort: Forschungsinstitut für Molekulare Pharmakologie, Gebäude 81, Robert-Rössle-Str. 10, 13122 Berlin s. A. |
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Hartmut Oschkinat
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Vorlesung / Übung: 1,5 SWS ( ECTS-Punkte)
Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Es finden Seminare mit Beiträgen der Studenten statt.
Prof. Dr. Oschkinat: oschkinat@fmp-berlin.de |
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21 667a
- V - |
Vorlesung zum Praktikum 21667b
Termine /Angaben s. Praktikum s. A. |
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Heinz Fabian
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Vorlesung/Praktikum: 4 SWS ( 4 ECTS-Punkte)
1. Inhalt:
Einführung in die Schwingungsspektroskopie
Fourier Transform Infrarotspektroskopie
Untersuchungen zur Faltung und Fehlfaltung von Proteinen
Konformationsanalyse von DNA's und RNA's
Charkterisierung von Zellen und Gewebe
2. Literatur:
wird während der Vorbesprechung genannt
Dr. Fabian: fabianh@rki.de |
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21 667b
- P - |
Biochemische und biomedizinische Anwendungen der IR-Spektroskopie und IR-Mikroskopie
Vergabe: 20.10., 9.00, Hs, Thielallee 63, Vorbespr.: 21.10., 10.00, Praktikum 25.02. bis 05.03., 9.00-17.00, R. 064, Robert-Koch-Inst., Nordufer 20, 13353 Berlin s. A. |
|
Heinz Fabian
|
Vorlesung/Praktikum: 4 SWS ( 4 ECTS-Punkte)
1. Inhalt:
Einführung in die Schwingungsspektroskopie
Fourier Transform Infrarotspektroskopie
Untersuchungen zur Faltung und Fehlfaltung von Proteinen
Konformationsanalyse von DNA's und RNA's
Charkterisierung von Zellen und Gewebe
2. Literatur:
wird während der Vorbesprechung genannt
Dr. Fabian: fabianh@rki.de |
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21 668a
- V - |
Vorlesung zum Praktikum 21668a
Vergabe: 20.10., 9.00 Uhr, Hs, Thielallee 63, Vorb.: 21.10., 10:00 Uhr, Termin: 25.02. - 05.03. (inkl. P ganztags), Robert-Koch-Institut, Raum 064, Nordufer 20, 13353 Berlin s. A. |
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Dieter Naumann
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Praktikum/Vorlesung insgesamt: 4 SWS ( 4 ECTS-Punkte)
1. Contents:
Fourier Transform Infrared Spectroscopy (FT-IR) is used to characterize structure and dynamics of macromolecules such as nucleic acids, proteins and membrane lipids. Basic theory of vibrational spectroscopy and Fourier transform methodologies will be discussed as well as spectral data evaluation techniques like difference spectroscopy, Fourier self deconvolution and factor analysis. Experiments to be performed include
(I) measurements on proteins in H2O and D2O, H/D-exchange characteristics, influence of amino acid exchange on structure and stability of proteins
(II) temperature induced refolding of globular proteins under thermodynamic and kinetic control, detection of folding intermediates
(III) in situ characterization of amyloid structure formation
(IV) conformational transitions in RNA/DNA-structures
(V) membrane structures, polymorphic phase behaviour of membrane lipids
(VI) analysis of intact cells and tissue structures.
Dr. D. Naumann: NaumannD@rki.de |
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21 668b
- P - |
Strukturuntersuchungen an biologischen Makromolekülen mittels Fourier-Transform-Infrarotspektroskopie
Vergabe: 20.10., 9.00 Uhr, Hs, Thielallee 63, Termin: Vorb.: 21.10., 10.00, Praktikum 25.02. - 05.03. (inkl V ganztags), Robert-Koch-Institut, Raum 064, Nordufer 20, 13353 Berlin s. A. |
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Dieter Naumann
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Praktikum/Vorlesung insgesamt: 4 SWS ( 4 ECTS-Punkte)
1. Contents:
Fourier Transform Infrared Spectroscopy (FT-IR) is used to characterize structure and dynamics of macromolecules such as nucleic acids, proteins and membrane lipids. Basic theory of vibrational spectroscopy and Fourier transform methodologies will be discussed as well as spectral data evaluation techniques like difference spectroscopy, Fourier self deconvolution and factor analysis. Experiments to be performed include
(I) measurements on proteins in H2O and D2O, H/D-exchange characteristics, influence of amino acid exchange on structure and stability of proteins
(II) temperature induced refolding of globular proteins under thermodynamic and kinetic control, detection of folding intermediates
(III) in situ characterization of amyloid structure formation
(IV) conformational transitions in RNA/DNA-structures
(V) membrane structures, polymorphic phase behaviour of membrane lipids
(VI) analysis of intact cells and tissue structures.
Dr. D. Naumann: NaumannD@rki.de |
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21 669a
- V - |
Kryo-Elektronenmikroskopie und 3D-Rekonstruktion von Makromolekülen für Studenten der FB Bio/Chem/Pha und Humanmedizin (ab 8. Semester)
Termin: n. V. , 2 Wo ganztägig, Vorbesprechnung: 27.10., 10.00 Uhr s.t., Anmeldung ab Oktober, Ort: FEM, Raum 205, Fabeckstr. 36a s. A. |
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Christoph Böttcher
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Praktikum / Vorlesung / Seminar: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Dr. C. Böttcher: bottcher@chemie.fu-berlin.de |
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21 669b
- S - |
Seminar zum Praktikum
Termin: n. V. , 2 Wo ganztägig, Vorbesprechnung: 27.10., 10.00 Uhr s.t., Anmeldung ab Oktober, Ort: FEM, Raum 205, Fabeckstr. 36a s. A. |
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Christoph Böttcher
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Vorlesung / Seminar/Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Dr. C. Böttcher: bottcher@chemie.fu-berlin.de |
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21 669c
- P - |
Seminar zum Praktikum
Termin: n. V. , 2 Wo ganztägig, Vorbesprechnung: 27.10., 10.00 Uhr s.t., Anmeldung ab Oktober, Ort: FEM, Raum 205, Fabeckstr. 36a s. A. |
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Christoph Böttcher
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Vorlesung / Seminar/ Praktikum: insgesamt 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Dr. C. Böttcher: bottcher@chemie.fu-berlin.de |
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21 670
- P - |
Praktikum der Immunologie
Vergabe: 20.10.,9.00 Uhr, Hs, Thielallee 63, Voraussetzung: Teilnahme am Seminar "Immunologie im SS 2003, Robert-Koch-Institut, Raum 064, Nordufer 20, 13353 Berlin (U9, " Amrumer Str.") s. A. |
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Richard Kroczek,
u. Mitarb.
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Praktikum: 5 SWS (5 ECTS-Punkte).
Inhalt:
Theorie: Einführung in die Immunologie
Praktischer Teil: Isolierung von Zellpopulationen, magnetische Zellsortierung, Zellkultur, Zell-Aktivierung, Durchflußzytometrie, ELISA, Immunpräzipitation, Immunhistologie
Voraussetzung: Teilnahme am Seminar "Immunologie im SS 2003"
Prof. Dr. R. Kroczek: kroczekr@rki.de |
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21 671
- V - |
Molekulare Virologie
(2 SWS) Do 16.00-18.00, SR, Otto-Hahn-Bau, Thielallee 63 s. A. |
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Joachim Mankertz,
Annette Mankertz
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Vorlesung: 2 SWS ( 3 ECTS-Punkte).
Die molekulare Virologie stellt in Abgrenzung zur klassischen Virologie weniger eine Beschrei-bung der klinischen Aspekte viraler Erkrankungen, sondern vielmehr eine Erläuterung der mo-lekularen Interaktionen besonders zwischen virus- und wirtsspezifischen Proteinen und Nu-kleinsäuren dar. Das Wechselspiel dieser Molekülgruppen ist die Grundlage für den erfolgrei-chen intrazellulären Parasitismus der Viren. Zunächst wird im Überblick die Geschichte der Vi-rologie von ihren Anfängen im 19. Jahrhundert bis zum Einsatz modernster biochemischer, molekulargenetischer und immunologischer Techniken dargestellt. Nach der Definition des Vi-rusbegriffs erfolgt eine ausführliche Besprechung viraler Strukturen. Funktion und Aufbau des viralen Kapsids, Genomstrukturen, Replikationsmechanismen und die Expression der geneti-schen Information werden an typspezifischen Beispielen erläutert. Zum Abschluß des allgemei-nen Teils werden die Grundlagen virusbedingter Zelltransformation sowie aktuelle Erkenntnisse zur viralen Onkogenese dargestellt. Im speziellen Teil werden Replikationszyklus, Virus-Wirt-Interaktion und Pathomechanismen ausgewählter Virusgruppen besprochen. Den Beginn ma-chen hier die Bakteriophagen, an denen eine Vielzahl bedeutender virologischer Entdeckungen und Techniken zuerst beschrieben wurde. Es folgen Vorlesungen über das humane Immundefi-zienz Virus, das Hepatitis B Virus, das Epstein-Barr Virus sowie Viren, die Pflanzen infizieren. Den Abschluß der Vorlesungsreihe bildet die Darstellung neuer, unkonventioneller und unklas-sifizierter Viruserkrankungen.
Dr. A. Mankertz: A.Mankertz@rki.de
Dr. J. Mankertz: |
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21 672
- V - |
Molekulare Immunologie
Di. 18.00 bis 20.00 Uhr , Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Christian Freund
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Vorlesung: 2 SWS (3 ECTS-Punkte)
Bemerkungen zur Vorlesung
Folgende
Themenkomplexe werden unter anderem behandelt: T/B-Zell-Rezeptor
vermitteltes Signaling, Fc-Rezeptoren, Integrine, Cytokine, Costimulation,
Immunologische Synapse, Actin-Remodeling, Src-Kinasen,
Transkriptionsfaktoren.
Dr. C. Freund: cfreund@fmp-berlin.de |
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21 673
- V - |
Biochemische Grundlagen der Neurologie für Biochemie- und Biologie-Studenten
Termin: Montags 17 - 19.00 Uhr, Beginn: 20.10., Institut für Chemie - Biochemie, Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Susanne Arnold
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Vorlesung: 2 SWS (3 ECTS-Punkte).
Vorlesung für Biochemie- und Biologie-Studenten
Die Vorlesung gibt einen Einblick in die im Zentralnervensystem vorherrschenden biochemischen
Prozesse unter physiologischen und pathologischen Bedingungen.
Dr. S. Arnold: arnold@mdc-berlin.de |
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21 675
- S - |
Anleitung zum wissenschaftlichen Arbeiten
Termin: n. V. (Tel.: 28460-654), Ort: Deutsches Rheumaforschungszentrum, Schumannstr. 21/22, Berlin-Mitte s. A. |
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Alf Hamann
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Sekretariat Prof. Dr. A. Hamann: spengler@drfz.de |
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21 676
- S - |
T-Zellclub
Mo 9.15 -11.00 Uhr (wöchentlich), Ort: Deutsches Rheumaforschungszentrum, Seminarraum 3, Schumannstr. 21/22, Berlin-Mitte s. A. |
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Alf Hamann
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Seminar: 2 SWS (2 ECTS-Punkte)
Sekretariat Prof. Dr. A. Hamann: spengler@drfz.de |
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21 678
- V - |
Gene und Genome: Die Zukunft der Biologie. Der Besuch der Vorlesung ist Voraussetzung für die Teilnahme an praktischen Lehrveranstaltungen der Abteilung.
Vorbespr.: 28.10., 18.00 - Hs, MPI für Molekulare Genetik, Ihnestr. 73, Beginn: 04.11., 18.00 - 20.00 s. A. |
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Hans Lehrach
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Inhalt:
Die Vorlesung ist geeignet für StudentInnen aller naturwissenschaftlich ausgerichteten Fachbereiche, die bereits Grundwissen in Biologie und Genetik besitzen. Es werden Grundlagen zum Verständnis der Analyse des Genoms bei Mensch und Tier vermittelt. An Fallbeispielen werden verschiedene Ansätze zur systematischen funktionellen Genomanalyse vorgestellt.
Prof. Dr. H. Lehrach: Lehrach@molgen.mpg.de |
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21 679
- P - |
Mitarbeitspraktikum für Biochemiker im Hauptstudium
n. V. und Rücksprache in den Arbeitsgruppen, Thielallee 63 s. A. |
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Volker A. Erdmann,
Ferdinand Hucho,
Gerd Multhaup,
Shiao Oei,
Mathias Ziegler,
N.N.
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Inhalt:
Ziel des Praktikum ist die Einführung in das eigenständige wissenschaftliche Arbeiten als Vorbereitung zur Diplomarbeit. Die Studierenden arbeiten einzeln unter der persönlichen Betreuung eines erfahrenen Wissenschaftlers an einem aktuellen Forschungsprojekt der Arbeitsgruppe mit. Die/Der Studierende arbeitet entweder Hand in Hand mit dem/der Betreuer/in an dessen/deren Projekt oder erhält ein kleines eigenständiges Subprojekt zur Bearbeitung, das sich in den Rahmen des Forschungsgebietes des/der Betreuer/in einfügt. Das 1:1 Betreuungsverhältnis zwischen Studierenden und Lehrenden und die Bearbeitung von aktuellen Fragestellungen ermöglicht den Studierenden einen guten Einblick in den Forschungsalltag. Während der Zeit des Praktikums nehmen die Praktikanten/innen an den Arbeitsgruppen und Literaturseminaren der Arbeitsgruppe teil.
Eingangsvoraussetzung ist die bestandene Diplom-Vorprüfung.
Aufgrund der großen Nachfrage ist eine rechtzeitige Anmeldung erforderlich. Hochmotivierte Studierende sind herzlich willkommen und werden bei Anfragen für Diplomarbeiten bevorzugt berücksichtigt.
4 Wochen = 8 ECTS-Punkte
6 Wochen =11 ECTS-Punkte
8 Wochen = 13 ECTS-Punkte
10 Wochen = 15 ECTS-Punkte
12 Wochen = 17 ECTS-Punkte
E-Mail-Adresse(n):
Prof. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de
Prof. Hucho: hucho@chemie.fu-berlin.de
Prof. Dr. G. Multhaup: multhaup@chemie.fu-berlin.de
PD Dr. Oei: lity@chemie.fu-berlin.de
PD Dr. Ziegler: mziegler@chemie.fu-berlin.de |
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21 680
- C - |
Biochemisches und Molekularbiologisches Colloquium
Fr 11.15-13.00 (n. bes. Ankündigung) Hs, Thielallee 63 s. A. |
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Volker A. Erdmann
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Prof. Dr. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de |
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21 681
- V - |
Chemische Nucleinsäuresynthese
Termin nach telef. Vereinbarung 466000-14, Thielallee 63 s. A. |
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Rolf Bald
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Vorlesung: 2 SWS (3 ECTS-Punkte).
Chemische Nucleinsäuresynthese
Inhalt:
1. Historischer Rückblick
a) Entdeckung und Isolierung der Nucleinsäuren
b) Aufklärung der chemischen Zusammensetzung
Heterocyclen: Pyrimidine und Purine
Zucker: Ribose und 2-Desoxyribose
Phosphorsäureester und Polyphosphate
c) frühe Strukturmodelle
2. Synthese von Einzelbestandteilen der Nucleinsäuren
a) Heterocyclen
b) Zucker
c) Nucleoside
d) Nukleotide
3. Synthese von Oligomeren
Schutzgruppen und Schutzgruppen-Kombinationen
Phosphorylierungen und Phosphitilierungen
Aktivierungen
Festphasensynthesen
Isolierung von Oligomeren
4. Oligonucleotide mit Modifizierungen
a) Heterocyclen
b) Zucker
c) Phosphat
d) Einführung von Markierungsgruppen
e) Stabilisierung von Oligomeren
5. Anwendung von Oligonucleotiden
a) Medizin: Diagnostik, Therapie
b) Analytik |
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21 685
- S - |
Doktorandenseminar "Ausgewählte Gebiete aus der Spurenelementforschung" für Biochemiker, Chemiker, Biologen
Beginn: 24.10., Fr 14.00 - 15.30, Ort: Hahn-Meitner-Institiut, Raum LR 338, 2. OG, Glienicker Str. 100,14109 Berlin s. A. |
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Antonios Kyriakopoulos,
Dietrich Behne
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Seminar: 2 SWS (2 ECTS-Punkte)
1. Inhalt:
Besprechung von Methoden zur Charakterisierung von ausgewählten Spurenelementproteinen durch Kombination von biochemischen, molekularbiologischen, radiochemischen und elementaranalytischen Verfahren.
Probleme durch Metallkontaminationen bei der Probenvorbereitung und der Anwendung verschiedener Verfahren zur Trennung und Messung von Proteinen.
Detektion von spurenelementhaltigen Proteinen in Suborganellen der Zelle des reproduktiven Systems der Ratte.
Bearbeitung ausgewählter Literatur aus dem Gebiet der Spurenelementproteine und Vorbereitung von kurzen Vorträgen zu diesem Thema.
Dr. A. Kyriakopoulos: kyriakopoulos@hmi.de |
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21 686
- S - |
Kommunikation im Nervensystem
Vorbesprechung und Terminabsprache am 20.10., 13.00 - 14.00, Hs, Thielallee 63
Seminar: 1 SWS (1 ECTS-Punkte)
Für Bioinformatiker: 2 cr., anrechenbar im Schwerpunkt A (Schwerpunktbereich A und Modul 10) s. A. |
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Frank Kirchhoff
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1. Inhalt (Content):
Allgemeine und aktuelle Aspekte der molekularen und zellulären Kommunikationsmechanismen im zentralen und peripheren Nervensystem sollen in Form einer Blockveranstaltung (Symposiumscharakter, zwei volle Tage) diskutiert werden.
General and recent aspects of molecular and cellular communication mechanisms of the nervous system will be discussed at a two-days symposium.
2. Literatur (literature):
Neuroscience-Exploring the Brain (Nov. 2000), 2nd edition by Bear, Connors, Paradiso (ISBN 0683305964)
Literatur (in Englisch) wird zur Verfügung gestellt.
Literature (in English) will be provided to the participants.
4. Beginn (beginning):
Vorbesprechung und Terminabsprache am 20.10., 13.00 - 14.00 Uhr, HS, Thielallee
Dr. F. Kirchhoff: kirchhoff@em.mpg.de |
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21 688
- V - |
Genexpression und Signaltransduktion
Do 18.15-20.00, Thielallee 63, Hs s. A. |
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Carmen Birchmeier,
Claus Scheidereit
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Vorlesung : 2 SWS (3 ECTS-Punkte).
Inhalt:
Es werden Grundlagen der Molekularbiologie sowie experimentelle Methoden auf den Gebieten der Gentranskription und Signaltransduktion in Eukaryonten behandelt. Einzelne Themen: Ebenen der Genexpressions-Kontrolle; Genstruktur; Polymerasen; Promoter- und Enhancerfunktion; Chromatinstruktur und -azetylierung ; generelle Transkriptionsregulatoren; induzierbare und gewebespezifische Transkriptionsfaktoren (TFs) (inkl. Steroidrezeptoren, NF-kB, AP-1, NF-AT etc.); DNA Bindungsdomänen; Regulation der TFs durch Serin/Threonin-Phosphorylierung, Proteolyse, Inhibitoren und Koaktivatoren; Funktion von TFs bei Apoptose (programmierter Zelltod), Proliferation und Onkogenese; Signalwege von der Zellmembran zu TFs; Rezeptortyrosinkinasen und Liganden, Tyrosinkinasen und deren Substrate; Wnt, TGFß und Hedgehog Signaltransduktion. Signaltrantsduktionskomponenten in der Krebsentstehung und bei der Embryonalentwicklung; retrovirale Onkogene und Transformation.
Der erste Teil (Transkription) wird gehalten durch C. Scheidereit, der zweite Teil (Signaltransduktion) durch C. Birchmeier.
PD Dr. C. Birchmeier: cbirch@mdc-berlin.de
PD Dr. C. Scheidereit: scheidereit@mdc-berlin.de |
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21 690
- W - |
Anleitung zu wissenschaftlichem Arbeiten auf dem Gebiet der Biochemie für Diplomanden und Doktoranden
Mo-Fr ganztägig, Thielallee 63, (n. V.) s. A. |
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Volker A. Erdmann,
Ferdinand Hucho,
Gerd Multhaup,
Shiao Oei,
Mathias Ziegler,
N.N.
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E-Mail-Adresse(n):
Prof. V. A. Erdmann: erdmann@chemie.fu-berlin.de
Prof. Hucho: hucho@chemie.fu-berlin.de
Prof. Dr. G. Multhaup: multhaup@chemie.fu-berlin.de
PD Dr. Oei: lity@chemie.fu-berlin.de
PD Dr. Ziegler: mziegler@chemie.fu-berlin.de |
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21 692
- P - |
Zellulare Immunologie
Vorb. Di, d. 8.7., 17.30, Seminarraum 3, Praktikum: 29.09.-10.10, 10.00 - 18.00, Voraussetzung Vorkenntnisse in Immunologie, Ort: Deutsches Rheumaforschungszentrum, Schumannstr. 21/22, Berlin-Mitte s. A. |
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Alf Hamann,
Jochen Hühn,
Rudolf Manz,
Alexander Scheffold,
Uta Syrbe,
Andreas Thiel
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Praktikum: 5 SWS (5 ECTS-Punkte)
1. Inhalt (contents):
Funktion und Analyse von Zellen des Immunsystems
2. Literatur (literature):
Janeway: Immunologie
Abbas: Cellular and Molecular Immunology
3. Weitere Bermerkungen:
Voraussetzung ist die Teilnahme am Seminar im SS.
Sekretariat Prof. Dr. A. Hamann: spengler@drfz.de |
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21 694
- V - |
Von der Evolution zu den Methoden des evolutiven Drug Designs
Termin: Mo 18.30 bis 20.00, Seminarraum, Thielallee 63 s. A. |
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Sven Klussmann
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Vorlesung : 2 SWS (3 ECTS-Punkte)
In der Vorlesung werden neue, evolutive Ansätze zur Wirkstoffsuche in der biotechnologischen Forschung und insbesondere aus der Sicht von Biotech-Unternehmen behandelt. Neben einer Einführung in die Evolution und Evolutionstheorien (u. a. RNA-Welt) werden Technologien vorgestellt, mit denen unter Ausnutzung von Evolutionsprinzipien -und mechanismen Moleküle (Oligonukleotide, Peptide, Antikörper - und Antikörperfragmente) mit neuartigen Eigenschaften entdecket und entwickelt werden können, wie z. B. In vitro Selektion von Nukleinsäuren (SELEX), Phage Display, mRNA Display u. a. Es werden zudem Einblicke in die Grundbegriffe der klinischen Entwicklung und der Produktion von Wirkstoffen sowie des Patentwesens gegeben.
Die Vorlesung richtet sich an Studenten im Hauptstudium der Fächer Biologie, Biochemie, Chemie und Pharmazie (Schwerpunkt eher Biologie und Biochemie).
Dr. Sven Klussmann: sklussmann@noxxon.net |
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